熒光PCR法，全稱為實時熒光定量聚合酶鏈式反應(Real-Time Fluorescent Quantitative PCR)，是一種在DNA擴增過程中實時監(jiān)測熒光信號變化的技術。
熒光PCR法的基本工作原理：
1.引物設計與特異性結合：實驗人員需設計一對與待測DNA模板序列兩端互補的特定引物，確保其僅與目標序列結合，避免非特異性擴增。
2.熒光標記探針或染料的應用
-TaqMan探針法：探針與目標DNA序列互補配對，且攜帶熒光基團和淬滅基團。在PCR延伸階段，DNA聚合酶的外切酶活性將探針水解，熒光基團與淬滅基團分離，釋放熒光信號。
-SYBR Green I染料法：SYBR Green I是一種結合于所有dsDNA雙螺旋小溝區(qū)域的染料，具有綠色激發(fā)波長。在游離狀態(tài)下,SYBR Green I發(fā)出微弱的熒光,但一旦與雙鏈DNA結合后,熒光信號會大大增強。因此,SYBR Green I的熒光信號強度與雙鏈DNA的數(shù)量相關,可以根據(jù)熒光信號檢測出PCR體系中的雙鏈DNA數(shù)量。
3.擴增過程與熒光信號監(jiān)測：PCR反應遵循變性、退火、延伸的循環(huán)規(guī)律。每個循環(huán)結束后，儀器通過激光激發(fā)熒光基團，檢測熒光信號強度，并記錄達到設定閾值時的循環(huán)數(shù)(Ct值)。Ct值與起始模板拷貝數(shù)呈線性關系，通過標準曲線可計算待測樣本的初始DNA量。
4.數(shù)據(jù)分析與定量：利用已知濃度的標準品建立標準曲線，將待測樣本的Ct值代入曲線方程，即可推算出原始模板的拷貝數(shù)。此方法實現(xiàn)了從定性到準確定量的跨越。
熒光PCR法的使用方法：
1.定期校準：確保儀器在使用前經過定期的校準和驗證，以保證數(shù)據(jù)的準確性。
2.清潔光學系統(tǒng)和樣品倉：定期清潔光學系統(tǒng)和樣品倉，保持設備內部清潔，避免污染影響測量精度。
3.檢查反應板：確保反應板無損壞且孔位正確，以避免影響反應效率。
4.日常維護：每次實驗后，應及時清理儀器表面的污漬和殘留物，并對關鍵部件進行消毒處理。同時，定期對儀器進行檢查和維護，及時發(fā)現(xiàn)并解決潛在問題。
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